Roche Multiplate 5 Analyzer Referenzhandbuch

Multiplate® analyzer

Kurzanleitung

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Roche Diagnostics

Multiplate® analyzer · Kurzanleitung · 2.1

Informationen zu diesem Dokument

Anmerkung zu dieser Ausgabe Diese Informationen sind für Anwender des Multiplate

analyzer bestimmt. Die Kurzanleitung bietet

grundlegende Informationen zum Arbeitseinstieg mit dem

Analyzer.

Es wurde mit großer Sorgfalt darauf geachtet, dass

sämtliche Informationen zum Zeitpunkt der Drucklegung

korrekt sind. Roche behält sich jedoch das Recht vor,

notwendige Änderungen im Zuge der technischen

Weiterentwicklung ohne Ankündigung vorzunehmen.

Handbuchversion Softwareversion Überarbei-

tungsdatum

Beschreibung der Änderung

2.0 2.04 Mai 2013 Anpassung an Softwareversion 2.04

2.1 2.04 April 2015 Ergänzungen zur Verwendung der Multiplate Transferpette.

Anpassung der Testverfahren.

y Änderungsnachweis

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Sofern nicht anders angegeben, gelten die Informationen

in diesem Dokument gleichermaßen für die Multiplate e-

line Pipette und die neue Multiplate Transferpette.

u Ausführlichere Informationen finden Sie im

Benutzerhandbuch zum Multiplate analyzer.

vorbehalten.

Roche Diagnostics GmbH

Sandhofer Straße 116

68305 Mannheim

Deutschland

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Inhaltsverzeichnis

Erste Schritte. . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 5

Handhabung von Reagenzien. . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 8

Lagerungsbedingungen für Reagenzien. . . . . . . . . . . . . 11

Ungeöffnete Reagenzflaschen . . . . . . . . . . . . . . . . . . 11

Rekonstituierte Reagenzien . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 12

Handhabung der Vorwärmröhrchen . . . . . . . . . . . . . . . . 14

Durchführen von Tests mit der elektronischen Pipette . 16

Elektronische Pipette: Vermeiden von Bedienungsfehlern .

23

Vermeiden von Bedienungsfehlern . . . . . . . . . . . . . . . . . 25

Durchführen von Tests mit manueller Pipettierung . . . . 27

Testverfahren für Hirudin- bzw. Heparinblut. . . . . . . . . . 32

Testverfahren für Citratblut . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 33

Multiplate Parameter . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 34

Sensitivität der Reagenzien. . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 37

Wartung der elektronischen Pipette . . . . . . . . . . . . . . . . 39

Erste Schritte 5

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Erste Schritte

Die Multiplate Software wird auf dem Betriebssystem

Windows 7 ausgeführt. Zum Starten bzw. zur Anmeldung

bei Windows ist ein Passwort erforderlich:

Nach Eingabe des Passworts wird die Software

automatisch gestartet, und die Erwärmung des

Messblocks auf 37 °C beginnt. Die aktuelle Temperatur

wird in der Statusleiste angezeigt. Das Gerät erreicht die

Solltemperatur innerhalb von 10 Minuten.

Benutzername

multiplate

Passwort

multiplate

Erste Schritte 6

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Roche empfiehlt, vor der ersten Messung einer Schicht

eine elektronische Kontrolle durchzuführen (Multiplate

> Elektronische QK starten). Bevor die elektronische

Kontrolle gestartet wird, muss das System mindestens

20 Minuten in Betrieb sein. Bereiten Sie die Reagenzien

vor. Füllen Sie die Vorwärmröhrchen mit Diluentlösung

(NaCl 0,9 %; NaCl/CaCl

2

bei der Verwendung von

Citratblut), stellen Sie sie in die entsprechenden

Positionen und bereiten Sie die Spitzen vor. Überprüfen

Sie vor Gebrauch der elektronischen Pipette den Filter

und tauschen Sie ihn bei Bedarf aus.

Bereiten Sie die Messzellen vor (überprüfen Sie das

Verfallsdatum und stellen Sie sicher, dass sich der

magnetische Rührstab in den Messzellen befindet) und

lagern Sie das entnommene Blut bei Raumtemperatur

(z. B. im Reagenzhalter). Blutproben sollten innerhalb von

0,5 bis 3 Stunden nach der Entnahme analysiert werden.

Stellen Sie die Probenröhrchen keinesfalls auf einen

Rotationsmischer.

A Menüleiste C Schnellzugriffstasten

B Statusleiste D Kanalanzeige für fünf

Kanäle

A

B

C

D

Erste Schritte 7

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WARNUNG

Infektionsgefahr durch Kontakt mit Proben und

zugehörigen Materialien

Bei Kontakt mit Humanprobenmaterial kann es zu

Infektionen kommen. Alle Materialien und mechanischen

Komponenten, mit denen Humanprobenmaterial

bearbeitet wird, sind potenziell infektiös.

r Befolgen Sie beim Umgang mit allen Laborreagenzien

und Patientenproben die üblichen

Vorsichtsmaßnahmen. Jeglicher Abfall ist gemäß den

vor Ort geltenden Vorschriften zu entsorgen.

u Verwandte Themen

• Anweisungen zum Austauschen des Pipettenfilters

finden Sie unter Wartung der elektronischen Pipette

(S. 39)

Handhabung von Reagenzien 8

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Handhabung von Reagenzien

r So bereiten Sie Reagenzien vor

1

Rekonstituieren Sie den Inhalt einer Reagenzflasche

vorsichtig, indem Sie 1,0 ml destilliertes oder

entionisiertes Wasser zugeben.

2

Schwenken Sie das Reagenz behutsam und lassen Sie

die verschlossene Flasche dann 10 Minuten lang bei

18–25 °C stehen.

3

Schwenken Sie die Flasche vor dem Gebrauch

vorsichtig, bis eine homogene Lösung entstanden ist.

Schaumbildung ist zu vermeiden.

Handhabung von Reagenzien 9

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r So aliquotieren Sie Reagenzien in

Tagesportionen

1

Um nach der Rekonstitution die höchstmögliche

Stabilität zu erhalten, pipettieren Sie Reagenzaliquote

von jeweils ≥ 100 μl in Aliquotgefäße für den

täglichen Bedarf.

A Aliquotgefäß C Sicherheitsverschluss

B Originalflasche

C

A

B

Handhabung von Reagenzien 10

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Lagern Sie die Aliquote fachgerecht.

Die Aliquotgefäße müssen zwischen den einzelnen

Messungen verschlossen werden, um eine

Verdunstung zu vermeiden, die zu

Konzentrationsänderungen führen kann. Aus diesem

Grund empfiehlt der Hersteller keine Verwendung von

Aliquoten mit einem Volumen von unter 100 μl.

3

Nach dem Aufteilen des Reagenzes müssen die

Sicherheitsverschlüsse der Aliquotgefäße fest

verschlossen werden. Die Lagerungsbedingungen

sind auf den nachfolgenden Seiten beschrieben.

q Die Reagenzflaschen sind mit dem

Rekonstitutionsdatum zu beschriften. Aufgetaute

Reagenzien dürfen nicht wieder eingefroren werden.

Solange die Originalflaschen der rekonstituierten

Reagenzien nicht verwendet werden, sollten sie

gekühlt und nach den Anweisungen des Herstellers

gelagert werden.

Lagerungsbedingungen für Reagenzien 11

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Lagerungsbedingungen für Reagenzien

q Die chargenspezifischen Daten sind stets den

aktuellen Packungsbeilagen zu entnehmen.

Ungeöffnete Reagenzflaschen

Lagern Sie ungeöffnete Reagenzflaschen bei 2–8 °C. Die

lyophilisierten Reagenzien sind bis zum angegebenen

Verfallsdatum haltbar.

Lagerungsbedingungen für Reagenzien 12

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Rekonstituierte Reagenzien

ADPtest, RISTOtest, TRAPtest, ASA Reagent,

Prostaglandin E1 Reagent

Nach der Rekonstitution sind die Reagenzien (in der

Originalflasche) bei 2–8 °C 7 Tage haltbar.

Eine Lagerung bei –15 bis –25 °C verlängert die

Haltbarkeit auf 4 Wochen. Nach dem Auftauen ist das

Reagenz bei 18–25 °C 24 Stunden haltbar.

ADPtest RISTOtest TRAPtest ASA Reagent Prostaglandin E1

Reagent

Lagerungsbedingungen für Reagenzien 13

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ASPItest

Nach der Rekonstitution ist das Reagenz bei 2–8 °C

24 Stunden haltbar.

Eine Lagerung bei –15 bis –25 °C verlängert die

Haltbarkeit auf 4 Wochen. Nach dem Auftauen ist das

Reagenz bei 18–25 °C 24 Stunden haltbar.

COLtest

Nach der Rekonstitution ist das Reagenz bei 2–8 °C (in

der Originalflasche) 7 Tage haltbar.

q Das Reagenz COLtest darf nicht eingefroren

werden!

ASPItest

COLtest

Handhabung der Vorwärmröhrchen 14

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Handhabung der Vorwärmröhrchen

Füllen Sie das Vorwärmröhrchen zu Beginn eines

Messtages mit Multiplate mit Diluentlösung (NaCl 0,9 %;

NaCl/CaCl

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bei der Verwendung von Citratblut) und

stellen Sie es in eine der Vorwärmpositionen im Analyzer.

Handhabung der Vorwärmröhrchen 15

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Die Röhrchen sind auch direkt bei Sarstedt

(www.sarstedt.com) erhältlich.

WARNUNG

Falsche Ergebnisse aufgrund nicht geeigneter

Vorwärmröhrchen

Die Verwendung nicht geeigneter Vorwärmröhrchen

kann zu falschen Testergebnissen führen.

r Es müssen die richtigen Vorwärmröhrchen verwendet

werden, damit die korrekte Temperatur der

Diluentlösung gewährleistet ist.

WARNUNG

Verunreinigtes NaCl (und Vorhandensein von

Konservierungsstoffen)

Wenn das NaCl verunreinigt ist (und ggf.

Konservierungsstoffe vorhanden sind), kann dies die

Testergebnisse beeinflussen.

r Die Röhrchen sind regelmäßig auszutauschen und mit

steriler Kochsalzlösung (NaCl 0,9 %) zu befüllen.

Durchführen von Tests mit der elektronischen Pipette 16

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Durchführen von Tests mit der elektronischen

Pipette

r So führen Sie Tests mit der

elektronischen Pipette durch

1

Klicken Sie auf die Schaltfläche Auto Pipette.

1

Durchführen von Tests mit der elektronischen Pipette 17

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2

Geben Sie die Patienten-ID ein und wählen Sie den

gewünschten Test aus.

Es können bis zu fünf Tests gleichzeitig durchgeführt

werden. Benutzerdefinierte Tests sind in der Testliste

mit [ud] gekennzeichnet.

3

Klicken Sie auf die Schaltfläche Messreihe prüfen

und starten.

2

3

Durchführen von Tests mit der elektronischen Pipette 18

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4

Stellen Sie die Messzellen in die auf dem Bildschirm

aufgeführten Messpositionen.

5

Schließen Sie das bzw. die Sensorkabel an die

Messzelle(n) an.

4

5

Durchführen von Tests mit der elektronischen Pipette 19

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6

Klicken Sie auf die Schaltfläche Pipettierprogramm

starten.

Auf dem Bildschirm finden Sie genauere

Anweisungen.

7

Führen Sie die einzelnen Pipettierschritte durch,

indem Sie jeweils die Starttaste an der elektronischen

Pipette drücken.

Der aktuelle Pipettierschritt wird durch einen Pfeil

gekennzeichnet. Nachfolgende Schritte sind mit

einem Punkt, bereits ausgeführte Schritte mit einem

Häkchen markiert.

6

7

Durchführen von Tests mit der elektronischen Pipette 20

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8

Pipettieren Sie die Diluentlösung und die Blutprobe in

die Messzellen.

Die 3-minütige Inkubationszeit wird automatisch

gestartet.

Nach Ablauf der Inkubationszeit (kanalspezifisch)

ertönt ein Signalton und der Anwender wird

aufgefordert, das entsprechende Reagenz sofort in die

Messzellen zu geben.

9

Geben Sie das jeweilige Reagenz in die Messzellen.

Nach Abschluss des letzten Pipettierschritts für den

jeweiligen Kanal wird die Messung automatisch

gestartet.

8

9

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