(Deutsch)
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**HINWEIS: Das rekonstituierte ATPase weist eine Haltbarkeit von 2Tagen auf, wenn dieses bei 2 bis 8°C gelagert wird
(bis zu 12Stunden bei 20 bis 25°C). Das rekonstituierte ATPase bei 2 bis 8°C lagern, wenn dieses nicht verwendet wird.
Das rekonstituierte ATPase nicht einfrieren.
LL1-Reagenz**
1. Das LL1-Fläschchen (grüne Kappe), das den lyophilisierten Luciferin-Luciferase-Komplex enthält, önen. Den
Gummistopfen vorsichtig abnehmen; Inhalt steht unter Vakuum.
2. Das LL1-Pueräschchen (orange Kappe) önen und den gesamten Puerinhalt in das LL1-Fläschchen geben oder
pipettieren.
3. Den Gummistopfen wieder aufsetzen und das Fläschchen 5-mal umdrehen, um das lyophilisierte LL1 aufzulösen.
Anschließend vorsichtig kreisen lassen. NICHT SCHÜTTELN.
**HINWEIS: Das rekonstituierte LL1 weist eine Haltbarkeit von 5Tagen auf, wenn dieses bei 2 bis 8°C gelagert wird
(bis zu 12Stunden bei 20 bis 25°C). Die rekonstituierten ATPase- und LL1-Reagenzien bei 2 bis 8°C lagern, wenn diese
nicht verwendet werden. Rekonstituierte LL1 nicht einfrieren.
Extraktionsmittel (schwarze Kappe)
Die Extraktionslösung kann umgehend verwendet werden. Nach Anbruch bei 20 bis 25°C lagern. Danach nicht wieder
im Kühlschrank lagern. An einem dunklen Ort lagern.
Vorbereitung des 3M MLS II Geräts
a. Das System für die erste Verwendung reinigen
1. Zuerst das 3M MLS II Gerät und anschließend den Computer einschalten.
2. 3M™ Mikrobielles Lumineszenz System (MLS) II Software starten.
3. Drei Fläschchen mit der 3M MLS Reinigungslösung in den Injektoren des 3M MLS II Geräts platzieren.
4. In der 3M MLS II Software die Registerkarte „Übersicht“ önen und einen „Wash Assay“ durchführen.
5. Die drei Fläschchen mit der 3M MLS Reinigungslösung durch drei Fläschchen mit ATP-freiem Wasser ersetzen und
einen zweiten „Wash Assay“ durchführen.
Ausführliche Informationen zur Reinigung der Injektoren des 3M MLS II Geräts nden Sie im 3M MLS II
Benutzerhandbuch.
b. Füllen der Injektorleitungen des 3M MLS II Geräts mit Reagenzien
Wichtig: Sicherstellen, dass alle Reagenzien (rekonstituiertes ATPase, Extraktionsmittel und rekonstituiertes LL1)
die Umgebungstemperatur (20 bis 25°C) erreicht haben, bevor der Reagenzien Kontroll Assay und der UHT Assay
durchgeführt werden.
1. Fläschchen mit ATP-freiem Wasser durch rekonstituiertes ATPase (an Injektor A), Extraktionsmittel (an Injektor B)
und rekonstituiertes LL1 (an Injektor C) ersetzen. Fläschchen zur späteren Lagerung wieder mit Gummistopfen und
Kappen verschließen.
2. In der 3M MLS II Software die Registerkarte „Übersicht“ önen und einen „Prime Assay“ durchführen.
Ausführlichere Informationen zum Füllen des 3M MLS II Geräts nden Sie im 3M MLS II Benutzerhandbuch.
HINWEIS: Das Füllen der Injektoren vor der Durchführung eines Reagenz Kontroll Assays und eines Molkereiprodukte
Screening Assays ist erforderlich, um sicherzustellen, dass die Injektoren des Geräts und Reagenzäschchen mit den
Reagenzien des 3M MLS UHT Molkereiprodukte Screening Kits vorgefüllt wurden. Ist dies nicht der Fall, kann es zu
falsch-negativen oder falsch-positiven Ergebnissen kommen.
c. Durchführung eines Reagenz Kontroll Assays
Die Durchführung eines Reagenz Kontroll Assays wird stets vor der Produktprüfung empfohlen, um sicherzustellen, dass
das 3M MLS II Gerät ordnungsgemäß funktioniert und die Reagenzien ordnungsgemäß verarbeitet werden. Ausführliche
Informationen zum Reagenz Kontroll Assay und der Rekonstitution der ATP-Reagenz nden Sie in den Anweisungen der
3M MLS ATP Reagenz Kontrolle oder 3M Clean-Trace positive Oberächenkontrolle (ATP10).
1. Einen 3M MLS Streifen mit Mikrovertiefungen (mindestens 6 Vertiefungen) in einem 3M Halter für Streifen mit
Mikrovertiefungen platzieren. Anstelle des 3M MLS Streifens mit Mikrovertiefungen kann eine 3M MLS Platte mit
Mikrovertiefungen verwendet werden.
2. 50l des rekonstituierten ATP-Reagenzes (ATP10 oder 3004 siehe Tabelle 2) auf den Boden der letzten
4Vertiefungen (C1, D1, E1 und F1) pipettieren. Die Vertiefungen A1 und B1 sollten leer sein.